УДК 639.3.07:639.212 (574.1)

Западно-Казахстанский аграрно-технический университет имени Жангир хана

Одним из рентабельных и перспективных направлений товарного осетроводства в настоящее время является интенсивное выращивание бассейновым методом осетровых, которые составляют не только как товарную продукцию, но и для пополнения маточного поголовья в рыбных хозяйствах. Русский осетр во многих странах мира разводится, как объект товарного осетроводства, и изучение его биотехнологии имеет для нашего региона важное хозяйственное значение.

Русский осетр относится к роду – Acipenger, к семейству – Acipenseridae и к отряду – Acipenseriformes. Они отличаются продолжительным периодом жизни, поздним созреванием и в естественных условиях не ежегодным нерестом, поэтому для них характерна низкая воспроизводительная способность. И вопрос об искусственном выращивании до товарной продукции осетровых бассейновым способом в современных рыночных условиях, актуальна.

Бассейновый метод выращивание осетровых представляет собой бассейны различных типов (круглые, силосные и прямоугольные), в которых доращивают рыб различного возраста до товарной продукции при их более плотных посадок и интенсивном кормлении. В сравнении с садковым методом содержания осетровых, бассейновый метод имеет ряд преимуществ: полная регулировка условия содержания; соблюдение интенсивности и характер водообмена; абсолютное поддержание температурного и гидрохимического режима; круглогодичное выращивание товарной продукции; механизированность и автоматизация рыбоводных процессов [1,2,3,4].

В данное время бассейновый метод выращивания маточного поголовья и молоди русского осетра широко применяется в рыбоводных хозяйствах России и Казахстана. И высокая эффективность выращивания осетровых бассейновым методом в прямую зависит от интенсивности водообмена, качества и температуры воды. При таких условиях отмечают авторы, осетровых можно выращивать, применяя высокую плотность посадки, и за 6-8-ми месячный период с 1м² бассейна; особенно с прямоугольных можно получить до 30-50 кг товарной продукции [5,6].

Целью нашего исследования было сделать анализ по содержанию осетровых в условиях бассейна (аквариума) в помещении (цеха) ЗКАТУ имени Жангир хана, изучить рост и набор массы в зимне-весенний период года, выявить наиболее оптимальные условия по доращиванию до товарной продукции годовиков русского осетра бассейновым методом.

Осетровых поместили в прямоугольный бассейн размером (5×1×1), то есть аквариум имел 5 метров длины, 1 метр ширины и метр высоты и находился в помещении на высоте 1 м от пола. Дно бассейна согласно инструкции было в сторону стока покатое. Вода подавалась непрерывно в бассейн принудительно одним большим насосом и двумя малыми насосами, последние были установлены над аквариумом (рисунок 2).

Струи воды направлялись через отверстие флейты, которые были просверлены под разными углами, что дает возможность орошать по всей поверхности и дну бассейна. Флейта имела форму пластмассовой трубы, длиной 120 см и диаметр просверленных отверстий был равен 1 см. При монтировании один конец флейты (трубы) был соединен с водопадающей сетью, другой закрыт колпачком. Над каждым бассейном располагаются по 2 флейты под тупым углом. Вода вытекает из бассейна через периферический сток, к которому подведен из под дна сливная труба, соединенная с резервуаром воды через многослойный фильтр.

Благоприятный кислородный режим одно из основных требований при интенсивном выращивании осетров бассейновым методом.

В кормлении рыб использовали в начале содержания специальные осетровые корма в форме крупки российского производства, затем перешли на измельченное мясо карповых рыб, в основном карася. Кормили два раза в сутки утром в 9.00 часов и вечером в 17.00 часов.

Ежедневно за весь период выращивания измеряли температуру воды и содержание в ней растворенного кислорода оксиметром и температуру воздуха в помещении градусником. Условие содержания после периода адаптации осетровых, в основном поддерживали стабильно: температура воды в среднем за весь период был равен 15,3 ± 0,02 °С; Содержание в воде растворенного кислорода изменялось в пределах 9,02 – 13,6 мг/л и в среднем составило за весь период содержания 11,5 ± 0,10 мг/л; температура в помещении в зимнее время колебалась в пределах 10,1 – 16,4°С, что составило в среднем 13,2 ± 0,14°С, в весенние месяцы от 13,1 – 20,1° С, что соответственно в среднем по группе равен 16,7 ± 0,40°С.

Анализируя данные таблицы в зимние месяцы, живая масса осетров в среднем составили 486 ± 0,20г. а среднесуточный привес соответственно 3,9 ± 0,04г. В последнем месяце зимы живой вес увеличился в среднем на 62г. и среднесуточный привес составил 4,5 ± 0,08 г. (таблица).

Такое увеличение массы тела произошло в результате повышения температуры, как в помещении в среднем - 20 °С и воды - 18,5 °С, так при увеличении дачи кормов особенно рыбьего мяса в 2 раза, то есть на 12 рыб в бассейне задавалось до 350г в сутки.

В мае месяце снизился прирост живой массы у осетров, в среднем по группе составил 890 ± 0,02 г. Хотя в этом месяце у рыб аппетит не снижался, но они вели себя беспокойно, часто выпрыгивая на поверхность бассейна, и в основном держали тело в вертикальном положении при этом голова находилась над водой. Среднесуточный привес по группе в этом месяце был равен 4,8 ± 0,04г.

Наибольший пик прироста живой массы осетров в нашем исследовании отмечались на последнем месяце наблюдении, и в среднем по группе составил 1116 ± 0,03г, при лимите 810- 1420г, а среднесуточный привес был равен 5,3 ± 0,07г.

Таким образом, полученные данные свидетельствуют о существенном влиянии температурных условии, как в помещении, так и в воде на прирост живой массы осетровых при их содержании бассейновым методом в зимне-весенний период года. Также немаловажную роль играет в содержании, кормление осетровых различными видами кормами, и количество растворенного кислорода в воде.

В заключении можно сказать, что эффективное развитие индустриального осетроводства возможно благодаря технологическим преимуществам содержания осетровых, основанное на интенсивных методах выращивания в бассейнах, как один из перспективных направлении товарного рыбоводства.

Литература

1. Привезенцев, Ю.А. Рыбоводство / Ю.А.Привезенцев, В.А. Власов.- М.: Мир, 2004.- 456 с.

2. Калядин, С.А. Временные нормативы по выращиванию молоди сибирского осетра в садках на искусственных кормах / С.А.Калядин // Красноярское отд. Востсибрыбниипроект.- Красноярск, 1992.- Т.387.- 7 с.

3. Иоганзен, Б.Г. Акклиматизация и разведение ценных рыб в естественных водоемах и водохранилищах Сибири и Урала / Б.Г.Иоганзен [и др.], Свердловск.: Средне-Уральское кн. изд-во, 1972.- 286с.

4. Злоказов, В.Н. Разработка биотехники разведения сибирского осетра/ В.Н.Злоказов // Отчет Новосиб. отд. СибНИИРХа.- Новосибирск,1969.- 60 с.

5. Егоров, А.Г. Байкальский осетр / А.Г.Егоров.- Улан-Удэ: Изд-во СО РАН СССР, 1961.- 122с.

6. Заделенов, В.А. Рост и рационы молоди енисейского осетра при выращивании на живых и искусственных кормах / В.А.Заделенов, В.А.Морозов.- Известия ГосНИОРХ.-Л.,1989.- Вып. 296.- С.42-49.
УДК 638.1
ОСОБЕННОСТИ РАЗВИТИЯ И ПРОДУКТИВНОСТЬ

СЕМЕЙ МЕДОНОСНЫХ ПЧЕЛ

РАЗВИВАЮЩИХСЯ НА СТАНДАРТНЫХ И УВЕЛИЧЕННЫХ

ГНЕЗДОВЫХ РАМКАХ
Н.В. Пристач, доктор с.-х. наук, профессор, К.А. Рожков, ассистент
Санкт-Петербургский государственный аграрный университет
Бұл мақалада стандартты және үлкейтілген ұяларда дамушы бал араларының даму ерекшеліктері мен өнімділігі қарастырылған.
В данной статье рассматриваются особенности развития и продуктивность семей медоносных пчел развивающихся на стандартных и увеличенных гнездовых рамках.
The development features and the productiveness of honeybees’ families growing up in standard and enlarged nest frames are considered in this article.
Основные проблемы современного пчеловодства - это прерванность кормовых запасов зимой и разбросанность пчелиного расплода на большом количестве гнездовых рамок весной и летом. Для поддержания необходимого микроклимата в таком гнезде пчёлы значительно больше потребляют кормовых запасов на обогрев и меньше - на питание. Жизнь впроголодь выступает постоянным стрессом, на фоне которого развиваются всевозможные болезни.

Воспроизводство пчелиных семей напрямую связано с доступностью кормовых запасов в течение всего года. При этом концентрация корма имеет решающее значение, особенно для развития отводков. Чтобы выяснить влияние концентрации корма на развитие семей, сбор корма и отстройку сотов, были подобраны две аналоговых группы.

Взяток с ивовых пород семьи использовали хорошо, и к середине мая от семей 1 опытной группы была сформирована первая партия ранних сборных отводков, а спустя три недели от каждой семьи сформирован индивидуальный отводок. Формирование отводков от семей контрольной группы отставало на две недели, хотя их количество было такое же (таблица 3).

Несмотря на неблагоприятные метеорологические условия в период главного медосбора семьи 1 опытной группы собрали значительное количество товарного меда, а отводки сделанные от них обеспечили себя кормом для предстоящей зимовки. Семьи контрольной группы так же хорошо развились, но товарного меда собрали меньше, хотя полностью обеспечили себя и отводки кормовыми запасами на зиму (таблица 3).
Таблица 3 - Результаты осенней ревизии 2007 года

Полученные данные свидетельствуют о том, что применение опытных гнездовых рамок 435×470 мм способствует созданию благоприятного кормового режима в гнездах независимо от погодных условий, концентрации расплода, раскрытию потенциала матки по яйценоскости, успешному наращиванию силы семей. Вследствие большого количества расплода молодые пчелы не бездействуют, стремление к роению сдерживается, период роста семьи увеличивается, зрелость семьи наступает с большим количеством пчел и расплода. Использование опытные гнездовых рамок 435×470мм содержащих большое количество расплода сокращает затраты труда на формирование отводков, позволяет формировать сборные противороевые отводки сразу сильными способными принимать участие в медосборе наравне с зимовалыми семьями.

Использование увеличенных гнездовых рамок 435×470мм в климатических зонах с холодным климатом будет способствовать лучшей сохранности медоносных пчел зимой, увеличению численности вида, сохранению экологического равновесия в дикой природе, лучшему опылению сельскохозяйственных культур.





ВЕТЕРИНАРИЯЛЫҚ ҒЫЛЫМДАРЫ

УДК 6166:614:9:616

Нужно отметить, начиная с 15-го дня и до конца срока исследования (29 суток) ни в одном из внутренних органов не уда­лось обнаружить свободных корпускулярных бруцелл. Начиная с 21-го дня опыта положительную иммунофлуоресцентную реакцию на бруцеллезный антиген у всех подопытных животных отмечали также в цитоплазме эндотелиальных клеток, гладкой мышечной и в соединительной тканях стенки отдельных артериол, венул и капилляров РЛУ, КРЛУ, селезенки, а также в стенке приносящих артериол и базальной мембране капилляров некоторых сосудистых клубоч­ков почек. Иммунофлуоресценция их в основном была равномерно-диффузного характера, лишь изредка в базальной мембране капилля­ров почечных клубочков она имела гранулярно-хлопьевидный характер.

Иммуноморфологические исследования органов и тканей иммунизированных животных позволяют объективно оценить общую морфологическую реакцию организма в ответ на привитый антиген, выяснить уровень обменных процессов и изучить степень побочного влияния прививочных препаратов. Выше перечисленными методами не удается определить специфику клеточных реакций на антиген в иммунокомпетентных органах, поэтому в решении этого вопроса наиболее важным является использование метода флуоресцирующих антител.

Динамика количества антителообразующих клеток, у подопытных овец представлены в таблице 1.

Из данных таблицы 1, видно, что все противобруцеллезные вакцины из штаммов 19, Rev-1 и 82-ПЧ в дозе 75 млрд. м.т. вызывают образование и увеличение количества плазмоцитов, выраба­тывающих антитела против бруцелл, в иммунокомпетентных органах вакцинированных овец, наибольшее число которых наблюдали через 2 недели исследования.

Результаты наших исследований показывают, что плазмоциты, вырабатывающие антитела к бруцеллам вакцинных штаммов 19, Rev-1 и 82-ПЧ, локализовались в лимфоузлах по ходу тяжей от коркового вещества к воротам, пре­имущественно в мозговых тяжах, а в селезенке в пульпарных тя­жах. Антителообразующие клетки в этих органах встречались в ос­новном в виде очаговых скоплений из 3 - 12 клеток, находящихся в различной стадии дифференциации. У антителообразующих плазмоцитов ярко светилась только цитоплазма, а ядро было свободно от специфических антител.

Вирулентная культура Br.melitensis подопытных овец спустя 150 дней после инокуляции вакцин из штаммов бруцелл 19, Rev-1 и 82-ПЧ в разных дозах, вызывало повышение уровня антителообразующих клеток в лимфатическом узле эти данные представлены в таблице 2.

Проведенные нами исследования показали, что наибольшее количество антителообразующих клеток в РЛУ отмечали у овец, при­витых вакцинным штаммом бруцелл 82-ПЧ в дозе 100 млрд. м.т., в КРЛУ у вакцинированных штаммом Rev-1, в предлопаточном лимфоузле и селезенке у иммунизированных штаммом 19, а наименьшее их число наблюдали у животных, привитых противобруцеллезной вакци­ной из штамма 82-ПЧ в дозе 50 млрд. м.т., а также у зараженных вирулентной культурой Br.melitensis без предварительной иммунизации.

Следовательно, бруцеллы различных вакцинных штаммов 19, Rev-1 и 82-ПЧ хо­рошо расселяются по органам привитых овец и фагоцитируются сис­темой мононуклеарных фагоцитов, способствуя тем самым приобрете­нию прочного иммунитета против бруцеллеза.
УДК 619: 616,9: 636,3

ПОКАЗАТЕЛИ КРОВИ ОВЕЦ

ИММУНИЗИРОВАННОЙ МОНОВАКЦИНОЙ

ПРОТИВ ЛЕПТОСПИРОЗА И ПАСТЕРЕЛЛЕЗА
К.Е. Мурзабаев, М.Г. Султанов, преподаватели
Западно-Казахстанский аграрно-технический университет имени Жангир хана
Лептоспироз және пастереллезге қарсы моновакцинамен иммундау жануарларда тығыз иммунитет қалыптастырып, иммундалған қой қаны көрсеткіштерінен вакцинаның иммунологиялық әсерін анық байқатады.
Показатели крови иммунизированных овец, свидетельствуют о выраженном иммунологическом действии моновакцин против лептоспироза и пастереллеза и формирования у животных напряженного иммунитета.
The blood indexes of immunized sheep are the evidence of strong immunological action of momovaccines against leptospirosis and pasteurellosis and the formation of animals’ strained immunity.

Овцеводство всегда являлось одной из ведущих отраслей сельского хозяйства Республики Казахстан. В настоящее время в республике свыше 1 млн. голов овец. Выращиваются породы шерстного и шерстно-мясного направлений, тонкорунные, полутонкорунные. Животных разводят на всей территории Республики. Система содержания овец в республике пастбищно-стойловая с использованием естественных пастбищ.

Серьезным препятствием на пути дальнейшего увеличения поголовья овец и повышения их продуктивности является ряд инфекционных болезней наносящих серьезный ущерб овцеводству. Сегодня во многих странах мира производят вакцины различных видов, которые вызывают развитие иммунитета к клиническим формам лептоспироза: абортам, преждевременным родам, рождению мертвого или нежизнеспособного приплода. Для спецефической профилактики, направленной не только на клинические проявления болезни, но и на выработку иммунитета.

Одним из важнейших разделов в иммунологии является учение о комплексной иммунизации [1,2,3,4,5]. Для оценки полноценности напряженности и длительности поствакцинального иммунитета при иммунизации комплексной вакцины нами были поставлены задачи изучение изменения показателей и состава крови до и после вакцины. Цель наших исследований – изучение влияния моновалентной вакцины (лептоспироза и пастереллеза) на некоторые морфо - биохимические показатели крови овец.

Опыт провели в ветеринарной клинике ЗКАТУ имени Жангир хана Западно-Казахстанской области. В зимне-весенний период 2007 года на овцах акжаикской породы в возрасте от 1 до 3 – х лет.

С этой целью сформировали 2 группы (по10 голов) по принципу аналогов.

I – опытную группу вакцинировали в комплексе против пастереллеза и лептоспироза, отдельно, моновакциной.

II – группа была контрольная.

Первой опытной группе проводили вакцинацию против лептоспироза и пастереллеза в дозе по 2 мл, внутримышечно.

Подсчет форменных элементов крови проводили в камере Горяева, общий белок – рефлектометрически, количество гемоглобина по методу Сали, СОЭ по методу Панченко. Полученные результаты и обсуждения. У всех подопытных и контрольной группы после иммунизации исследовали пробу крови через 1, 7, 14 суток после вакцинации. Полученные результаты приведены в таблицах 1, 2, 3.
Таблица 1 - Показатели крови овец через сутки после иммунизации

Из таблицы 1 видно, что после ведения вакцин у животных опытной группы заметно, снижение количества эритроцитов на 0,5 млн/мкл, лейкоцитов на 0,1 г/л, гемоглобина на 0,1 г/л при незначительном увеличении тромбоцитов по 10 тыс/мкл и общего белка на 0,4 г/л, чем у овец контрольной группы.

Из данных таблицы 2, у овец опытной группы заметно увеличение форменных элементов на 0,5 млн/мкл, лейкоцитов на 0,2 тыс/мкл, тромбоцитов на 10 тыс/мкл, гемоглобина на 2,0 г/л, СОЭ на 0,2 мм/мин, а также гематокрита на 3%, при незначительном снижении общего белка на 0,5 г/л, чем овец в контрольной группе.

Из таблицы 3, видны следующие изменения показателей крови, у овец опытной группы увеличения общего белка на 1,9 г/л, при снижении эритроцитов на 0,2 млн/мкл, лейкоцитов на 0,1 тыс/мкл, гемоглобина на 0,5 г/л и СОЭ на 0,2 мм/мин, чем у овец контрольной группы.

Таким образом, у овец опытной группы заметны морфо – биохимические изменения показателей крови, на 7–е и 14–е сутки после вакцинации, что свидетельствуют о формировании у животных напряженного поствакцинального иммунитета.

Заключение
Изменения показателей крови овец, опытной группы свидетельствуют о выраженном иммунологическом действии вакцин против лептоспироза и пастереллеза и формированием у животных напряженного иммунитета.
Литература

1. 
   Шатров, А.П. Лептоспироз сельскохозяйственных животных /А. П. Шатров. А. Ф. Кирпичев. Издательство "Кайнар" Алма-Ата 1977.-92 с.
   

3. Ильясов, Б. К. Связь между распространением лептоспирозов среди с – х животных и заболеваемости / Б.К. Ильясов // Тезисы докл. междунар. научно – практич. конф.- Семей. – 2002.- С. 158–162.

4. 
   Малахов, Ю. А. Эпизоотическая ситуация по лептоспирозу в России / Ю. А. Малахов [и др.] // Ветеринария.- 2002.- №2.- С. 7–8.
   
5. 
   Покровский, В.И. Поствакцинальные реакции: механизм развития и профилактика / В.И. Покровский, Б.Ф. Семенов // Микробиология. – М. – 1999.- № 5.-С. 6-8.
   

УДК 619:616.9:57.063.8

Қойылған мақсатқа жету үшін мүйізді ірі қараның пастереллезіне қарсы құрамында Pasteurella multocida A, Pasteurella multocida В және Pasteurella multocida Д антигендеріне қарсы антиденелері бар поливалентті гипериммунды сарысу дайындадық.

Жануарларды гипериммундау төмендегі сызбаға сәйкес жүзеге асырылды:

1-ші кезең (грундиммунитет тудыру);

2-ші кезең (гипериммундауға дайындық);

3-ші кезең (өндірістік гипериммундау).

Иммундау үшін 3-4 жастағы клиникалық сау өгіздер пайдаданылды. Таңдалынып алынған жануарларды биопрепараттар алу үшін пайдаланылатын жануарларды дайындау және санитарлық өңдеу тәртіптері туралы нұсқауға сәйкес жұқпалы ауруларға тексердік.

Пастерелла культураларын Хоттингер сорпасында өсірдік. Әр штамды бөлек сеуіп 37⁰С-да термостатта екі тәулік бойы өсірдік. Өсу тазалығына тексергеннен кейін культураларды бірдей көлемде араластырып, 10% полиэтиленгликоль қостық және 0,5%-тік формалинмен инактивтедік.

Грундиммунитет тудыру мақсатында поливаленттік антигенді 3- және 5 см³ (1 см³-та 10⁹ ж.т.б.) көлемінде, егу аралықтарына екі апта салып екі рет ендірдік. Гипериммундаудың дайындық кезеңі 1-ші кестеде берілген сызбаға сәйкес өткізілді.

Пастерелла антигендері соңғы рет ендірілгеннен кейін 10-14 күннен соң продуцент өгіздерден сарысудың белсенділігін анықтау үшін сынама қан алдық. Сарысу белсенді болған жағдайда қан алып, оның сарысуын пастереллезге шалдыққан бұзауларды емдеу және жануарлар арасында пастереллездің таралуынан сақтандыру мақсатында пайдаландық.

Антиденелердің титрлері төмен болған жағдайда өгіздерді гиперимммундауды жалғастырып, арасына 5-7 күн салып 40 мл. көлемінде тері астына тірі антигенді ендірдік. Осыдан соң тағыда қан сарысуын алып, оның құрамындағы пастереллезге қарсы антидене титрін анықтадық.

Гипериммундау барысында жануарлардың дене температурасын үнемі өлшеп отырдық. Олдардың дене температуралары көтерілген жағдайларда кезекті антиген ендіруді температура қалыпты деңгейге түскеннен кейін ғана жалғастырдық.

1-ші кестеде продуценттерді гипериммундау сызбасы берілді.
Кесте 1 - Продуценттерді гипериммундау сызбасы

Жоғарыда атап өткендей, гипериммундау нәтижелерін әр продуценттің қанының сарысуын пастереллалардың 96-А, 97-В және 96-Д серологиялық варианттарының бастапқы штамдарына қарсы антидене тирлеріне тексеру арқылы бақылап отырдық. Диффузды преципитация реакциясында 1:4, ал өсу сынамасында 1:16 сұйылтымды минималды титр ретінде алдық. Антидене титрін екі реакцияның көмегімен бақылау мүмкін болмаған жағдайда, өсу сынамасын ғана пайлаландық.

Продуценттерді гипериммундау барысында, ай сайын пастерелланың үш серологиялық варианттарына қатысты сарысу титрлерінің деңгейлері анықталынып отырылды. Егер сероварианттардың біреуіне қарсы антидене титрі төмендеген болса, өгіздерді арасына 5-7 күн салып 40 мл көлемінде тірі антигенмен антиденелердің титрлері теңескенше 1-2 рет ектік.

2-ші кестеде пастереллалардың А, В және Д серологиялық варианттарының антигендерімен гипериммундалған қан сарысуын зерттеу нәтижелері берілді. Кестеде көрсетілгендей, үш өгізді пастерелланың 96-А штамымен, үш өгізді пастерелланың 97-В штамымен, үш өгізді пастерелланың 96-Д штамымен және үш өгізді пастерелланың 96-А, 97-В және 96-Д штамдарының антигендерінің 1:1:1 қатынасындағы қоспасымен гипериммундадық.

Серологиялық зертеулер барысында, пастерелланың бастапқы антигендеріне қарсы антидене титрлері 60 күн бойы сақталынып, 90-шы күнге қарай 3-5 сұйылтымға төмендейді, ал 120-шы күні бастапқы сұйылтымдарда және сұйылтылмаған сарысуларда ғана анықталынады.

Алынған зерттеу нәтижелеріне сүйене отырып, 96-А, 97-В және 96-Д штамдарына қарсы дайындалған гипериммунды сарысуды мүйізді ірі қараларды пастереллезден емдеу мақсатымен қолдануға болады деп қорытынды жасадық.

УДК 619:616.9:57.063.8

Біз өзіміздің зерттеу жұмыстарымыздың барысында мүйізді ірі қараның пастереллезіне қарсы поливаленттік вакцина мен құрамында пастерелла мультоциданың А,В және Д серологиялық варианттарының антигендеріне қарсы антиденелер бар гипериммунды сарысу дайындау үшін штамдар іріктеу мақсатында эпизоотиялық штамдардың морфологиялық, тинкториалдық, культуралдық және биохимиялық қасиеттері зерттелінді.

Эпизоотиялық штамдардың культуралдық - морфологиялық қасиеттерін зерттеу жұмыстарының нәтижелері барлық штамдардың агарда шамалы өсетіндігін, ал ет-пептонды сорпа, Хоттингер және Мартен сорпаларына жылқы қанының 5-10%-тік сарысуын қосқанда 7 сағат өскеннен кейін қоректік ортаның біркелкі болып лайланатындығы байқалды.

Барлық культуралар әдетте овоидты пішінді болып, грам әдісімен қызғылт түске боялды (теріс нәтижелі). Штамдардың арасында 7-8 бактериядан тұратын тізбек тәрізді және өлген бұзаудың өкпесінен алынған өсіндерден жіпше тәріздес пастереллалар кездесті. Соңғылары ақ тышқандар арқылы екі рет пассаж жасағанда пішіндерін өзгертті.

Романовский-Гимзе тәсілімен бояғанда изоляттардың анық көрінетін биполярлығы табылды, бұл көбінесе өкпе және бауырдан бөлінген штамдардан байқалынды. Эпизоотиялық штамдардың арасынан қандай да бір қозғалу белгісі бар түрлер анықталынған жоқ.

Ет-пептонды сорпада барлық өсіндер қоректік ортаны сәл лайландыра өсті, пробиркада жұқа қабықшаның немесе сақинаның түзілуі байқалмады. Әдетте, штамдарды қоректік орталарға сепкеннен кейінгі 4-5 күндерде сорпа толық мөлдірленіп, пробирканы сәл шайқаған кезде бұрымтәріздес болып көтерілетін кілегейлі тұнба түзілді.

Пастерелланың таза өсіндері ет-пептонды агарда ұсақ, шеттері тегіс, мөлдір түсті колониялар түрінде өсті. Қиғаш түскен жарықта бұндай колониялар сәл көгілдірлеу түс берді.

Аздаған изоляттар М- және R-колониялар түзіп, олардың саны сақтау мерзімі ұзарған сайын көбейе түсті. Пастереллалар белсенділігі аз және биохимиялық қасиеттері жағынан өзгергіш бактериялардың қатарына жатады. Штамдар жаңадан бөлінген кезде бір қасиет көрсетсе, дәл осы штамдар бірнеше рет қайтадан сепкеннен кейін басқа қасиет көрсетуі мүмкін. Индол түзу - пастереллалардың негізгі қасиеті болып саналады. Кейбір ғалымдардың мәлімдеулері бойынша мүйізді ірі қара және қодастардан индол түзбейтін түрлер де бөлініп алынған.Әдетте, индол түзу қабілетін диссоциацияланған R-формалы пастереллалар жоғалтады. Пастерелла мультоцидаға тән штамдар сахароза, глюкоза, сорбит, маннитті ферменттеп, газсыз қышқыл түзеді. Лактоза, дульцит, мальтоза, рамноза, раффиноза, трегалозаға теріс нәтиже береді. Пастерелла штамдары арабиноза, ксилоза, левулеза және мальтозаға байланысты әртүрлі қасиет көрсетеді (Н.А. Радчук и др., 1991).

В.И. Покровскийдің (1998) мәлімдеуіне сәйкес пастерелла мультоцидаға биохимиялық сипаттамасына келесі белгілер тән: барлық штамдар маннит, трегалоза, ксилозаны ферменттеу, индол түзу, оксидазалық белсенділік. Мак-Конки агарында өскенде нәтиже әртүрлі, уреазаға – теріс, сорбит және лактозаны ферменттемейді.

Зерттеу жұмыстары барысында тексерілген 898 эпизоотиялық штамдар өздерінің морфологиялық, тинкториалдық, культуралдық және биохимиялық қасиеттеріне сәйкес пастерелла мультоцидаға жатқызылды.

96-А, 97-В және 96-Д штамдарының биохимиялық қасиеттерін зерттеу нәтижесінде оларды эталондық штамдардан ерекшелендіретін жаңа қасиеттер анықталынбады.

1. 
   Ветеринарная микробиология и иммунология / Н.А. Радчук [и др.].- М.: ВО Агропроиздат, 1991.
   
2. 
   Покровский, В.И. Медицинская микробиология / В.И. Покровский.- ГЭОТАР Медицина. М.: 1998.
   

УДК 619:617.089:636.3

Учитывая данные Начатова Н.Я. (1984), Потрясова А.Б. (1998), Романовой М.А. (2000), что транскраниальная электростимуляция (ТКЭС) обладает стимулирующим действием на обмен веществ, не вызывает побочных изменений, повышает неспецифическую резистентность.

На основании вышеизложенного целью наших исследований явилось изучение влияния ТКЭС на иммунологические показатели беременных коров.

Экспериментальную работу проводили в АО «Куйгенжар» на 10 коровах в возрасте 5-6 лет черно-пестрой породы.

Животные были подобраны по принципу парных аналогов во второй половине беременности (8 месяцев), и их разделили на 2 группы: опытная и контрольная, по 5 голов в каждой группе.

ТКЭС проводили аппаратом ГИ-1 (Начатов Н.Я., Комаров В.В. (1978), коровам опытной группы, находящимся стоя, при биаурикулярном (ухо-ухо) наложении, между электродами и кожей уха предварительно помещали марлевые салфетки, пропитанные физиологическим раствором.

Для стимуляции использовали импульсный ток прямоугольной формы, частотой 100Гц, длительностью импульсов 2,0 мс, силой тока 35 до 95 мА, в зависимости от индивидуальной чувствительности животного. Время стимуляции 10 минут.

Во время проведения ТКЭС коровы сохраняли статистическое положение в пространстве, в момент подачи тока наблюдалось беспокойство, и задержка дыхания через 10-15 секунд животные занимали позицию со слегка расставленными конечностями и опущенной головой, глаза закрыты, и у 2-х из 5 коров наблюдалось слюнотечение.

При анализе вышеуказанных таблиц в сравнительном аспекте до воздействия и после воздействия ТКЭС установлено, что в опытной группе отмечается повышение

Кроме того, установлено, что в опытной группе после воздействия ТКЭС происходит увеличение относительного количества Т-лимфоцитов на 8,8%, В-лимфоцитов на 37,63%, О-лимфоцитов на 12,9%, Т-хелперов на 13,2, и Т-супрессоров на 15%. Тогда как в контрольной группе отмечается незначительное увеличение содержания Т-хелперов на 8,5%, Т-супрессоров на 3,4%, и снижение количества В-лимфоцитов на 3,3% и О-лимфоцитов на 13,5%.

Необходимо также отметить повышение фагоцитарной активности в опытной группе на 8,3%, тогда как в контрольной группе этот показатель 2 раза меньше и повышение его составляет 4%.

Анализ систем Т - и В-лимфоцитов и их субпопуляции свидетельствует о том, что в периферической крови после ТКЭС увеличивается количество дифференцированных форм лимфоцитов Т-и В-лимфоцитов, Т-хелперов и Т-супрессоров, что свидетельствует о стимулирующем влиянии ТКЭС на показатели клеточного и гуморального иммунитета у коров.

УДК 619:636.4
ВЛИЯНИЕ ПРОБИОТИКА НА ОБМЕН ВЕЩЕСТВ

И ЕСТЕСТВЕННУЮ РЕЗИСТЕНТНОСТЬ ПОРОСЯТ
Е.Д. Шинкаревич, аспирант
Санкт-Петербургский государственный аграрный университет
Бұл мақалада пробиотикті зат алмасуға және торайлардың шынайы резистенттілігіне әсері туралы айтылады.
В данной статье речь идет о влиянии пробиотика на обмен веществ и естественную резистентность поросят.
In this article, it is spoken about probiotic influence on substances circulation and natural resistence of pigs.
Перевод животноводства на промышленную технологию содержания и кормления, ограничение контактов животных с почвой, растениями и другими естественными факторами, а также широкая химизация отраслей и нерациональное применение антимикробных средств способствует нарушению микробных экологических систем в пищеварительном тракте и возникновению дисбактериозов. В свою очередь это вызывает нарушение процессов пищеварения, обмена веществ, снижение резистентности и продуктивности животных, широкое распространение желудочно-кишечных болезней, особенно у молодняка. Установлено, что в условиях свиноводческих промышленных комплексов нарушение нормального состава микрофлоры желудочно-кишечного тракта весьма значительно и происходит оно за счет резкого уменьшения симбионтных микроорганизмов. При этом в составе кишечного биоценоза наблюдается высокая концентрация стафилококков, протея, дрожжеподобных грибов и других микроорганизмов.

Учитывая доминирующее положение бифидобактерий в организме животных, многие исследователи утверждают, что они являются показателем естественной резистентности животных. Это подтверждается тем, что при дисбактериозе из желудочно-кишечного тракта исчезают, прежде всего, бифидобактерии и, как следствие, сразу происходит нарушение процессов пищеварения, обмена веществ, снижается уровень кальция, железа, микроэлементов. Резко падает синтезирующая и ферментативная функция кишечной микрофлоры.

Мировой опыт свидетельствует, что в профилактике и лечении желудочно-кишечных болезней молодняка велико значение заместительной терапии, направленной на восстановлении кишечного биоценоза путем регулярного введения живых бактерий – представителей нормальной кишечной микрофлоры. Препараты, в состав которых они входят, известны под названием пробиотики.

Пробиотики – это биопрепараты, содержащие живые микроорганизмы – симбионты желудочно-кишечного тракта животных и человека. Действие пробиотиков основано на выработке различных биологически активных веществ, угнетающих рост патогенных бактерий, активизирующих иммунологические реакции животного, а также способствующих лучшему усвоению питательных веществ кормов. Использование пробиотиков в критические периоды жизни животного позволяет активизировать иммунологическую реактивность организма, стимулировать обмен веществ и продуктивность животных.

В связи с этим целью наших исследований являлось изучение влияния пробиотиков на обмен веществ и естественную резистентность поросят.
Материалы и методы
Исследования проводились в научно-исследовательской лаборатории и кафедре кормления сельскохозяйственных животных Санкт-Петербургского государственного аграрного университета, и в ЗАО "Витебскагропродукт" РБ.

В лаборатории Санкт-Петербургского государственного аграрного университета в результате проведенных исследований по совокупности признаков: высокой активности роста, кислотообразующей способности, интенсивности накопления биомассы – был отобран штамм Lactobacillus acidophilus EP 317. На основе данного штамма лактобактерий был разработан опытный образец пробиотика, который включает чистую культуру лактобактерий.

Анализ показателей белкового обмена и иммунобиологической реактивности показал, что (таблица 2) содержание общего белка в крови поросят опытных групп увеличилось до 69,73±0,94 г/л (Р.<0,01) в первой и 71,24±1,02 г/л (Р<0,01) во второй, против 63,71±0,98 г/л в контрольной группе.

Таким образом, при использовании пробиотических препаратов повышение альфа - и бета-глобулиновых фракций в сыворотке крови, что свидетельствует об активизации метаболизма белка, повышения в ткани липоидов, витаминов при использовании пробиотических препаратов.

К антропогенным источникам поступления сточных вод относятся:

- производственные сточ­ные воды;

- бытовые;

- атмосферные воды, проте­кающие по загрязненной тер­ритории;

- сель­скохозяйственные;

- храни­лища нефтепродуктов;

- свалки и захоронения твердых и жидких отходов;

- от­валы шлаков и пепла;

- хранилища минеральных удобрений;

- пыль и стоки автомобиль­ных дорог и т. д.

Сточные воды – это воды, которые были использованы на бытовые, производствен­ные и другие нужды, и, как правило, вследствие этого, загрязнены различными примесями, изменившими их первоначальный состав и физические свойства, а также воды, стекающие с территории населенных пунктов и промышленных предприятий, представляющие собой сложные гетерогенные смеси.

Производственные сточные воды образуются в результате загрязнения водопроводной воды в процессе использования ее в производстве. Они делятся на два типа это: загрязненные и условно-чистые.

Состав и концентрация загрязнений производственных сточных вод являются весьма разнообразными, так как они зависят от характе­ра того или иного производства, выпускаемой ими продукции и особенностей техно­логического процесса. Как правило, некоторые производства сливают несколько видов сточных вод, с различными химическими составами и содержаниями концентраций загрязнений. Загрязненные производственные сточные воды мо­гут быть подразделены на содержащие органичес­кие и минеральные загряз­нения.

Условно-чистыми считаются такие сточные воды, в которых содержится весьма малое количество концентрации загрязнений, можно спускать в водоем без предварительной очистки.

Бытовые сточные воды по природе загрязнения делятся на фекальные, поступающие из уборных и загрязненные в основ­ном физиологическими отбросами, и хозяйственные, поступающие из раковин, ванн, трапов, а также из бань, прачечные душей, после мытья помещений и др.

Бытовые сточные воды более или менее однообразны по составу. В основном в них содержатся органические загрязнения в нерастворенном и растворенном состоянии. Концентрация загрязнений зависит от степени разбавления их водопроводной водой, т. е. от нормы водопотребления. Особенность этих вод заключается в том, что они содер­жат большое количество синтетических моющих средств, созданных на основе синтетических поверхностно-активных веществ (СПАВ) и жи­ров. Сточные воды от предприятий общественного питания могут содержать до 200-1000 мг/л различных жиров. Важнейшей особенностью осадка является высокое содержание органических примесей (в среднем 65-75%). Осадки бы­товых сточных вод являются средой для развития болезнетворных микроорганизмов и насекомых, служат источником ухудшения сани­тарно-гигиенического состояния окружающей среды. Источником загрязнения природных вод могут стать твердые отходы в сточных водах; их скопление и несвоевременное удаление может привести к вспышкам инфекционных и эпидемических заболеваний населения.

Атмосферные сточные воды образуются в результате выпа­дения дождей и таяния снегов, и делятся соответственно на дождевые и талые. Они содержат преимущественно минеральные загрязнения и в меньшем количестве органические. Их загрязненность достаточно высока: по взве­шенным веществам - от 500 до 4000, по БПК - от 50 до 100 и по нефтепродуктам - от 8 до 25 мг/л. Для них характерна большая неравномерность поступления в канализацию. В сухую погоду они совсем отсутствуют, а в период сильных ливней их количество бывает весьма значительным. Секундные расходы атмосферных сточных вод могут в 50-150 раз превы­шать расходы бытовых вод от той же площади постройки горо­да или другого населенного пункта.

Хозяйственно-бытовые, сель­скохозяйственные и промышленные сточ­ные воды могут содержать ряд перечней природных и созданных человеком химических элементов и вещес­тв. Так как полностью очистить сточные воды является не воз­можным, то все эти вещества оказываются в почве, воде, атмосфере. Сточные воды приводят также к термическому загрязнению природ­ных вод и уменьшению концентрации кислорода, что сни­жает окис­литель­ный потенциал воды.

Вода является прекрасным растворителем, в котором могут раство­ряться органические и минеральные вещества, созданные как самой при­родой, так и синтезированные человеком. Поэтому природные воды, помимо огромного количества живых микроорганизмов различных форм и размеров, содер­жат в себе различные минеральные и органические вещества природного и антропо­генного происхождения, но в то же время в ней могут присутствовать вещества во взвешенном состоя­нии: частицы песка и глины, коллоидные и механические примеси.

К минеральным загрязнениям относятся песок, гли­на, шлак, бой стекла, растворы минеральных солей, кислот и щелочей. Органические загрязнения бывают растительного про­исхождения (остатки плодов, овощей, растений, бумага, расти­тельные масла и пр.) и животного (физиологические выделения людей и животных, остатки тканей живых организмов, органи­ческие кислоты, различные бактерии, в том числе и болезне­творные, дрожжевые и плесневые грибки, мелкие водоросли - так называемые бактериальные и биологические загрязнения). Наиболее опасными загрязнениями являются вещества органического происхождения.

В бытовых сточных водах содержатся такие болезнетворные (патогенные) бактерии, как возбудители заболеваний брюшно­го тифа, паратифа, дизентерии, сибирской язвы, а также яйца гельминтов (глистов), поступающие в сточные воды с физиоло­гическими выделениями людей и животных. Возбудители забо­леваний содержатся и в некоторых производственных сточных водах.

Деятельность человека во все времена оказывала определенное воздействие на его окружающую среду, и в основном отрицательное. Очень часто происходит загрязнение почв и водое­мов вредными хими­ческими веществами, в результате этой деятель­ности, приводящей к экологическим катастрофам. В последнее время все более актуальным становится вопрос охраны окру­жающей среды и экологии. Вопрос загрязнения водой среды является актуальным и для Казахстана, в частности, вопрос питьевой воды, которая используется в больших количествах в промышленных отраслях, сельских хозяйствах и бытовых нуждах населения.

В городах и в других населенных пунктах образуются загряз­нения различного характера, связанные с повседневной дея­тельностью человека. Львиная доля образующихся загрязнений приходится на промышленные предприятия, в результате их технологических процессов, использующих воду.

Интенсивное развитие различных производств способ­ствуют пос­туплению в во­доемы: нитратов, нитритов, пестицидов, фе­нолов, нефтепродуктов, так как многие промышленные предприятия зачастую используя чистую воду, сбрасывают образовавшиеся сточные воды в водоемы без очистки, отравляя этим самым водные ресурсы. Различные химические соединения, присутствующие в сточ­ной жидкости (нефтепродукты, жиры, масла, смолы, ядовитые вещества), которые наносят непоправимый ущерб, как здоровью людей, так и их окружающей среде. Накопление сточной жидкости на поверхности и в глубине поч­вы, а также в водоемах вызывает загрязнение окружающей сре­ды, исключает возможность использования водоемов для хозяй­ственных целей и является причиной возникновения инфекци­онных заболеваний.

Свалки и захоронения твер­дых и жидких отходов, отвалы шлаков и пепла, хранилища минераль­ных удобрений, животно­водческие комплексы, пыль и стоки авто­мобильных дорог, аэрозоли городов и т. д. все это способствует изменению химического состава природных вод.

Присутствующие в сточных водах фосфор и азот (тем­пература этих вод, как правило, выше температуры природных вод) способ­ствуют раз­витию сине-зеленых водорослей. Ин­тенсивное использование воды для охлаждения оборудования также ведет к термическому загрязне­нию вод, в результате чего повышается их температура, снижается содержа­ние кис­лорода и, соответственно, способность водоемов к самоочищению.

Вещества, поступающие в водные объекты, насчитываются десятками и даже тысячами наименований. Для того, чтобы признать эти загрязне­ния или вещества, в которые они могут трансформироваться, потен­циально опасными для здоровья человека, необходимо проведе­ние ряда специальных исследований, однако для всего спектра загрязнений такие ис­следо­ва-ния провести невозможно.

Независимо от происхождения присутствующие в природных водах примеси объединяются в группы по размеру и физико-химичес­кому состоянию. В соответствии с классификацией, разработанной Л. А. Кульским, примеси (загрязнения) природного и антропоген­ного происхождения подразделяются на 4 группы. Первые две груп­пы относятся к гетерогенным (неоднородным), другие две - к го­могенным (однородным).

По физическому состоянию загрязнения сточных вод делят­ся на растворенные и нерастворенные, обладающие различной дисперсностью.

Степень загрязнения сточных вод характеризуется содержа­нием в них, взвешенных и оседающих веществ, их биохимиче­ской и химической потребностью в кислороде, содержанием в них отдельных химических элементов и соединений, их актив­ной реакцией.

Нерастворенные вещества находятся в сточных водах в виде крупной взвеси, суспензий, эмульсии и пены и представляют собой частицы размером 0,1 мкм и более. Степень загрязнения сточных вод нерастворенными примесями обычно оценивают по содержанию в воде так называемых взвешенных веществ. По­следние составляют ту часть нерастворенных примесей, которая задерживается на бумажном фильтре при фильтровании через него воды. Количество взвешенных веществ по массе определя­ют после высушивания их при температуре 105 °С, т. е. в сухом состоянии. Часть взвешенных веществ, состоящая из грубодисперсных частиц с большой плотностью, под действием силы тяжести может выпадать из воды в осадок. Другая часть взве­шенных веществ, состоящая из мелкодисперсных частиц, плот­ность которых близка к плотности воды, может не осаждаться и оставаться во взвешенном состоянии.

Концентрация взвешенных и оседающих веществ в произ­водственных сточных водах различна - для разных производств и при расчетах может приниматься по данным анализов сточ­ных вод аналогичных производств или по заданию технологов.

Таким образом, для предотвращения антропогенных источников поступления сточных вод в современных условиях необходимо - рациональ­ный расход воды, где учитывается возможность повторного и многократного использования очищенных сточных вод в различных отраслях хозяйства, что, в свою очередь, способствует созданию «бессточных» про­мышлен-ных комплексов и действенной охраны водных источников от загрязнения и истощения. Поддержание санитарного благополучия городов и других населенных пунктов, а также промышленных предприятий воз­можно только при своевременном удалении с занимаемой ими территории сточных вод с последующей их очисткой и обезза­раживания.

УДК 631.36 (043.3)